GEO中GPL18573如何进行注释

GPL18573 如何进行注释?
从官网下载的GPL18573 soft文件是一串gse,如何将id与基因名进行对应?

引用 皆我百晓生 小程序回复内容作答:
在R语言中对GPL18573进行注释,你可以使用Bioconductor中的相关包。首先,你需要安装biomaRtlimma包:

install.packages("BiocManager")  # 如果未安装BiocManager,请先安装
BiocManager::install("biomaRt")
install.packages("limma")

然后,载入所需的库:

library(biomaRt)
library(limma)

接下来,你需要创建一个biomaRt对象,与你希望进行注释的数据库连接。在这种情况下,我们将使用Ensembl数据库:

ensembl <- useMart("ensembl", dataset = "hsapiens_gene_ensembl")

然后,你可以使用getBM函数来获取GPL18573中的所有基因信息以及它们的注释。假设GPL18573中的列名为gene_ids,你可以使用以下代码获取基因名和相关注释:

gene_ids <- c("ENSG00000157764", "ENSG00000230494")
annotations <- getBM(attributes = c("ensembl_gene_id", "external_gene_name", "description"),
                     filters = "ensembl_gene_id",
                     values = gene_ids,
                     mart = ensembl)

在上面的代码中,我们通过设置attributes参数来指定我们需要的注释信息,然后使用filtersvalues参数指定我们要注释的基因列表。最后,我们将结果存储在annotations对象中。

请注意,如果你的GPL18573文件不包含ensembl_gene_id列,你需要根据R包中提供的注释查询其他列名,如gene_idgene_name等。

希望这可以帮助到你!

去看他的说明文档,官网有对应的教程。

援引讯飞星火:
GPL18573是一个芯片数据文件,包含了基因表达数据。如果您想将id与基因名进行对应,可以按照以下步骤:

  1. 下载并解压所需的soft文件。您可以从GEO数据库中下载所需的soft文件。
  2. 打开soft文件,找到“gene2go”文件,该文件包含了基因ID和基因名的对应关系。
  3. 使用R语言读取“gene2go”文件,并将基因ID和基因名进行对应。

参考gpt:
结合自己分析给你如下建议:
GPL18573是一个基于Illumina NextSeq 500平台的人类基因芯片,可以用来检测人类基因的表达水平1。如果你从官网下载的GPL18573 soft文件是一串gse,那么可能是因为你下载的是GEO数据集的soft文件,而不是GPL平台的soft文件2。

GEO数据集的soft文件包含了多个样本的基因表达数据,以及对应的GPL平台信息。每个样本的基因表达数据都是以gse开头的一串数字表示的,这些数字是GEO数据库中分配给每个样本的唯一标识符3。如果你想要将这些gse与基因名进行对应,你需要先找到对应的GPL平台信息,然后使用相应的注释包或工具来进行注释。

一种简单的方法是使用R语言中的getGEO函数来下载并解析GEO数据集的soft文件,然后使用annotate函数来进行注释。下面是一个示例代码:

安装并加载相关的R包
install.packages(“Biobase”) install.packages(“GEOquery”) install.packages(“annotate”) library(Biobase) library(GEOquery) library(annotate)

下载并解析GEO数据集的soft文件
假设你下载的是GSE123456这个数据集
gse <- getGEO(“GSE123456”, GSEMatrix = TRUE)

查看该数据集使用的GPL平台
gpl <- Meta(gse)$platform_id

根据GPL平台选择相应的注释包
假设该数据集使用的是GPL18573这个平台
那么可以使用illuminaHumanv4.db这个注释包
如果没有安装这个注释包,需要先安装
source(“https://bioconductor.org/biocLite.R”) biocLite(“illuminaHumanv4.db”) library(illuminaHumanv4.db)

使用annotate函数来进行注释
将gse转换为表达矩阵
exprs <- exprs(gse[1])

获取探针ID
probe_id <- rownames(exprs)

获取基因名
gene_name <- getSYMBOL(probe_id, “illuminaHumanv4.db”)

将探针ID和基因名合并为一个数据框
anno <- data.frame(probe_id, gene_name)

GEO下载的数据在R中读取和注释

#  读取GEO下载的矩阵和注释
####  加载包 ----
library(readxl)
library(tidyverse)
library(GEOquery)

# 读取 series_matrix文件 ----
GSE_data <- getGEO(filename = "data\\GSE14520-GPL571_series_matrix.txt.gz", getGPL = F)

pd_GSE_data <- pData(GSE_data) #观察临床信息中的data processing,Microarray suite,MAS 5.0,即标准化方法,如果已经经过了MAS,一般情况下不需要再标准化了,避免矫枉过正
pd_GSE_data$data_processing[1]  #查看数据处理的方式
GSE_data_targets <-  pd_GSE_data %>%  # 提取有用的信息以便后续分析
  dplyr::select(sample_id = geo_accession,
                sample_name = title,
                tissue_type = `Tissue:ch1`)  


GSE_data_expr <- exprs(GSE_data) %>% 
  as.data.frame()  # 提取表达矩阵
# 数据集的标准化结果查看------
boxplot(exprs(GSE_data))  ## 箱线图查看数据是否标准化
## PCA  查看不同样本间的区别
PCA_new <- function(expr, ntop = 500, group, show_name = F){
  library(ggplot2)
  library(ggrepel)
  rv <- genefilter::rowVars(expr)
  select <- order(rv, decreasing = TRUE)[seq_len(min(ntop, length(rv)))]
  pca <- prcomp(t(expr[select, ]))#最核心的代码
  percentVar <- pca$sdev^2/sum(pca$sdev^2)
  d <- data.frame(PC1 = pca$x[, 1], 
                  PC2 = pca$x[, 2], 
                  group = group, 
                  name = colnames(expr))
  attr(d, "percentVar") <- percentVar[1:2]
  if (show_name) {
    ggplot(data = d, aes_string(x = "PC1", y = "PC2", color = "group")) + 
      geom_point(size = 2) +
      xlab(paste0("PC1: ", round(percentVar[1] * 100), "% variance")) + 
      ylab(paste0("PC2: ", round(percentVar[2] * 100), "% variance")) +
      geom_text_repel(aes(label = name),
                      size = 3,
                      segment.color = "black",
                      show.legend = FALSE )
  } else {
    ggplot(data = d, aes_string(x = "PC1", y = "PC2",color = "group")) + 
      geom_point(size = 2) +
      xlab(paste0("PC1: ", round(percentVar[1] * 100), "% variance")) + 
      ylab(paste0("PC2: ", round(percentVar[2] * 100), "% variance"))
  }
}
PCA_new(exprs(GSE_data), 
        nrow(GSE_data),
        group = GSE_data_targets$tissue_type)  # 组别以颜色显示

## getGEO 读取注释信息 ----
## AnnotGPL = T,用的是.gz的文件
GPL_data<- getGEO(filename ="data//GPL571.annot.gz", AnnotGPL = T)
GPL_data_11 <- Table(GPL_data)

## AnnotGPL = F,用的是.soft的文件
GPL_data_2 <- getGEO(filename = "data//GPL10687_family.soft.gz", AnnotGPL = F)
GPL_data_21 <- Table(GPL_data_2)

# 进行注释------
GSE_data_expr <- GSE_data_expr %>% 
  rownames_to_column() %>% 
  reshape::rename(c(rowname = "prode_id"))

GPL <- GPL_data_11 %>% 
  dplyr::select(ID,`Gene symbol`) %>% 
  reshape::rename(c(ID = "prode_id",`Gene symbol` = "GeneSymbol")) %>% 
  add_count(GeneSymbol,name = "n_gene") %>% 
  add_count(prode_id,name = "n_prode_id") %>% 
  dplyr::filter(n_gene < 1123) %>% # 选择能有对应基因的探针
  dplyr::select(c(-3,-4))

GSE_expr <- GSE_data_expr %>% 
  inner_join(GPL, ., by = "prode_id") %>% #p2s和上一步得到的结果再取交际,p2s放在右边是以它为准
  dplyr::select(-1) %>%  #去除第一列probe_id
  as.data.frame() %>% #因为aggregate需要数据框格式
  aggregate(.~ GeneSymbol, data = ., mean) %>%  #以symbol作为因子水平,把相似的数据放在一起取均值,最大值max,中位值median
  column_to_rownames(var = "GeneSymbol")

## 可视化注释后的矩阵,因为注释过程丢失了部分探针
boxplot(GSE_expr)
PCA_new(GSE_expr, 
        nrow(GSE_expr),
        group = GSE_data_targets$tissue_type)  # 组别以颜色显示
# 以RData 格式保存信息 ----
GSE14520_GPL571 <- GSE_data
GSE14520_GPL571_expr <- GSE_expr
GPL571 <- GPL_data_11
GSE14520_GPL571_targets <- GSE_data_targets

picDir <- "dealed_data"
dir.create(picDir )
save(GSE14520_GPL571,  # 矩阵
     GSE14520_GPL571_targets, # metadata
     GPL571, #注释信息
     file = paste('.',picDir,"GEOqury读取的GSE14520-GPL571_data.RData",sep="/"))
save(GSE14520_GPL571_expr,
     file = paste('.',picDir,"GSE14520-GPL571_expr.RData",sep="/"))